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ChIP实验全攻略:原理+操作步骤+结果解读+文献案例解析

ChIP-qPCR检测到DNA富集,就能证明蛋白直接结合DNA吗?富集信号越高,是不是代表结合越强?

ChIP是研究蛋白与DNA相互作用常用的实验方法,主要用于验证目标蛋白在特定DNA区域的富集情况,也可以结合ChIP-seq筛选潜在的DNA结合区域。

但很多同学真正做实验时,经常会遇到染色质打断不理想、IgG背景高、目标DNA富集不明显、结果不会分析等问题。

辉骏生物从ChIP实验原理、实验步骤、结果解读,到ChIP-qPCR和ChIP-seq文献案例,带大家把ChIP一次讲清楚。


ChIP实验原理

ChIP(染色质免疫沉淀)主要利用特异性抗体,富集与目标蛋白相关联的DNA片段。

简单来说,先利用甲醛固定细胞内的蛋白-DNA复合物,再通过超声将染色质打断。随后加入目标蛋白抗体和Protein A/G磁珠,将目标蛋白及其相关DNA片段一起沉淀下来。

最后经过洗涤、解交联和DNA纯化,获得的DNA可用于:

ChIP-qPCR:验证目标蛋白是否富集在已知DNA区域。

ChIP-seq:筛选目标蛋白在全基因组范围内的富集区域。

ChIP实验原理图-辉骏生物ChIP实验.png

图1 ChIP实验原理图


ChIP实验详细步骤

1、正式实验前,需要提前准备好:

ChIP实验前准备-辉骏生物.png

图2 ChIP实验前准备

注意:样本状态、ChIP抗体的特异性和Protein A/G磁珠(辉骏货号:FI8302)的富集效果非常重要。样本处理不当、抗体特异性差或磁珠结合效率低,都可能影响后续的ChIP实验结果。


2、实验详细步骤

辉骏生物ChIP实验详细步骤.png

注意:交联条件、染色质打断、抗体选择和洗涤条件是比较关键的几个环节。

洗涤太弱,容易出现杂带和非特异结合;洗涤太强,又可能把真正的弱互作DNA一起洗掉。

因此,需要根据目标蛋白的性质对实验条件进行调整。


ChIP实验结果怎么看?

做完实验后,重点看两个部分:诱饵蛋白WB和ChIP-qPCR。

诱饵蛋白WB

通过WB检测目标蛋白是否成功免疫沉淀。

主要看:

Input组:目标蛋白是否存在;

IgG组:是否存在非特异性富集;

Anti-Bait组:目标蛋白是否成功富集。

如果Anti-Bait组有明显条带,而IgG组没有明显条带,说明IP成功。

image.png

图3 ChIP实验诱饵蛋白WB结果图


ChIP-qPCR

通过qPCR检测目标蛋白在指定DNA区域的富集情况。

主要看:

Input组:作为起始DNA含量参照;

IgG组:判断非特异性富集背景;

Anti-A组:检测目标DNA区域的富集程度。

如果Anti-A组的目标DNA富集明显高于IgG组,说明目标蛋白A与B基因存在互作。

ChIP-qPCR统计图.png

图4 ChIP-qPCR统计图

注意:ChIP-qPCR有富集,不代表蛋白与DNA直接结合,还需结合DNA pull-down实验进一步验证。


  • ChIP-qPCR富集越高,说明蛋白与DNA结合越强吗?

不能直接这么判断。

ChIP-qPCR富集程度除了受到蛋白与DNA相互作用的影响,还会受到抗体特异性、交联效率、染色质打断效果、免疫沉淀效率及引物扩增效率等因素影响。


  • 如果想比较药物处理前后的富集变化,应该怎么做?

可以进行ChIP-qPCR定量分析:

① 设置分组:处理组和对照组。

② 做好对照:设置Input和IgG对照,使用相同的目标蛋白抗体和引物。

③ 定量比较:采用%Input进行归一化比较,至少进行3次独立生物学重复。


ChIP文献案例解读

1、ChIP-qPCR验证CBX8与GPX4互作

CBX8在GPX4启动子区域显著富集,表明CBX8可能参与GPX4的转录调控(图5f-g)。

ChIP-qPCR验证CBX8与GPX4启动子存在互作.png

图5 ChIP-qPCR验证CBX8与GPX4启动子存在互作


2、ChIP-qPCR验证lnc-GD2H调控NACA与Myog互作

过表达lnc-GD2H显著降低NACA在Myog启动子区域的富集,表明lnc-GD2H可抑制NACA结合Myog启动子(图6F,由辉骏生物提供ChIP试剂盒)。

ChIP-qPCR验证lnc-GD2H调控NACA与Myog互作.png

图6 ChIP-qPCR验证lnc-GD2H调控NACA与Myog互作

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有需要ChIP试剂盒的小伙伴可联系辉骏生物!


3、ChIP-seq筛选MYC转录因子潜在靶基因

ChIP-seq发现MYC在POLD1启动子区域存在明显富集信号(图7a)。

RT-qPCR实验表明敲低MYC后,POLD1表达明显下降(图7b)。

JASPAR结合位点预测和双荧光素酶实验进一步分析MYC对POLD1启动子活性的调控(图7c–e)。

ChIP-qPCR证实敲低POLD1后,MYC在多个靶基因启动子区域的富集降低(图7f)。

ChIP-seq筛选转录因子MYC的结合启动子.png

图7 ChIP-seq筛选转录因子MYC的结合启动子


总结

做好 ChIP,富集只是第一步。对照设计、染色质打断、抗体选择、结果分析,每一步都影响最终结论。 

辉骏生物再次提醒大家:ChIP 出现 DNA 富集,不等于蛋白直接结合 DNA,也不能单独用来证明转录调控功能。 一套完整的机制研究,通常需要双荧光素酶、DNA pull-down、位点突变、功能实验相互佐证。 

有蛋白核酸互作相关实验(ChIP-qPCR、ChIP-seq、双荧光素酶、DNA pull-down)或者试剂盒需求的科研伙伴,欢迎和辉骏生物沟通。


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