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Wang J . et al: ENO1 Binds to ApoC3 and Impairs the Proliferation of T Cells via IL-8/STAT3 Pathway in OSCC

中文标题:口腔鳞状细胞癌中ENO1与ApoC3结合并通过IL-8/STAT3通路抑制T细胞增殖

发表期刊:International Journal of Molecular Sciences

中科院分区:2区

影响因子:6.208

发表时间:2022年10月

合作单位:武汉大学

运用技术:GST pull down MS由辉骏生物提供技术支持,点击查看服务详情


● 研究概述

口腔鳞状细胞癌(OSCC)的淋巴结转移与预后不良有关,但很少有研究探讨术后淋巴引流(PLD)与转移性OSCC的相关性。α-烯醇化酶(ENO1)是一种代谢酶,与OSCC淋巴转移有关,但是其作用机制尚未阐明。本研究收集了OSCC患者转移和非转移淋巴结切除术后的淋巴引流液,研究了ENO1表达与转移的关系,并通过GST pull down MS实验找到了与ENO1相互作用的蛋白——载脂蛋白C-III (ApoC3);它们的结合导致了白细胞介素(IL)-8的产生,进而激活了Jurkat T细胞的STAT3信号通路,促进细胞凋亡,抑制Jurkat T细胞增殖。总之,这些发现阐明了ENO1在转移性OSCC中功能的分子机制,并为靶向ENO1治疗OSCC提供了新的策略。


● 研究结果

1. ENO1在人OSCC组织中高表达且与临床病理有相关性

IHC检测发现,ENO1在人口腔鳞状细胞癌(OSCC)中的表达水平比正常口腔粘膜(NOM)(p<0.001)(图1A)和口腔上皮发育不良(OED)(p<0.05,图1B)中的更高。进一步研究表明,ENO1与OSCC T分期之间没有明显的相关性(p>0.05,图1C,D),但有淋巴结转移的患者中的ENO1表达高于无淋巴结转移患者(p<0.05,图1E),ENO1在转移性淋巴结中的IHC染色也比非转移性淋巴结的更强(p<0.05,图1F,G)。ELISA结果显示,转移性OSCC患者PLD中的ENO1水平高于非转移性OSCC患者(p<0.01,图2A)。这些结果表明ENO1的高表达与淋巴结转移状态呈正相关。


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图1


2. OSCC中的ENO1与ApoC3相互作用

为了研究ENO1在OSCC淋巴转移中的作用机制,研究人员使用GST pull down方法捕获了ENO1在转移性OSCC患者PLD中的结合蛋白(图2B,C),并利用质谱(LC-MS/MS)技术对这些结合蛋白进行鉴定,结果显示有100个蛋白在OSCC PLD中显著富集,KEGG pathway对这些蛋白进行了分析(图2D)。对炎症发展至关重要的ApoC3蛋白被挑选用于后续验证,人OSCC细胞系CAL27和OSCC组织的双标记免疫荧光结果显示ApoC3和ENO1在CAL27细胞和OSCC组织中共定位。

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图2


3. ApoC3在OSCC组织中高表达

流式细胞术对OSCC细胞系CAL27和人的永生化口腔上皮细胞系HIOEC中膜ApoC3的检测显示,ApoC3在CAL27细胞中的表达更高(图3A,B,p<0.001)。在激光共聚焦显微镜下,ApoC3在CAL27细胞的细胞膜上高度表达,但在HIOEC细胞中少量表达(图3C)。用IHC染色显示ApoC3的表达显著高于NOM(p<0.05,图3D,E)。此外,ApoC3在转移淋巴结中的表达显著高于非转移淋巴结(p<0.01,图3F,G),ApoC3的表达与淋巴结转移呈正相关。聚类分析发现ENO1和ApoC3之间的表达趋势相似(图3H),Pearson相关分析说明两者之间的相关性(p=0.0479,r=0.2966,图3I)。


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图3

 

4. ENO1与ApoC3结合介导促炎细胞因子的产生

设计三种靶向ENO1(ENO1siRNA-1/2/3)干扰的siRNA,干扰效率检测确定了ENO1siRNA-2的效果最好(图4A)。通过QAH-INF-1细胞因子抗体阵列测试ENO1与ApoC3结合对CAL27细胞炎性细胞因子产生的影响(图4B)。结果表明, ApoC3刺激导致CAL27细胞产生的IL-8增加;当ENO1下调时,CAL27细胞产生的IL-8受到抑制(图4C),ELISA结果与细胞因子抗体阵列结果一致(图4D)。ELISA结果显示,对照组和ENO1干扰组的IL-8产生水平没有显著差异,而在用人重组ApoC3蛋白刺激后,这两组差异显著,IL-8的产生显著降低(p<0.01)。


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图4

 

5. IL-8通过STAT3信号通路抑制T细胞增殖

流式细胞检测显示,不同浓度重组IL-8蛋白处理后,Jurkat T细胞的凋亡率随IL-8浓度的升高而增加(图5A),当IL-8为0.8µg/mL时,凋亡率最高(p<0.001,图5B),且IL-8对Jurkat T细胞的Ki67表达具有抑制作用(p<0.001,图5C,D)。CCK-8结果显示,细胞增殖随IL-8浓度的增加而受到抑制(图5E)。为了研究IL-8调控Jurkat T细胞的潜在机制,Western blot和流式细胞术检测了p-STAT3的表达。通过与CAL27细胞共培养,Jurkat T细胞中的p-STAT3水平升高,但经过IL-8中和抗体处理后,p-STAT3的水平下降(图5F,G)。此外,IL-8受体CXCR1/2的抑制剂reparixin不同程度的降低了p-STAT3的水平(p<0.05,图5H,I)。用重组IL-8蛋白刺激后,Jurkat T细胞中的p-STAT3水平增加(p<0.001,图5J,K)。在用下降后,STAT3抑制剂恢复了IL-8处理对Ki67水平的抑制(p<0.01,图5L,M)。这些结果表明,STAT3在IL-8对Jurkat T细胞的调节过程中起重要作用,IL-8促进STAT3的磷酸化并损害Jurkat T细胞的增殖。

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图5

 


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