蛋白质相互作用(PPI)是细胞信号调控与分子机制研究的核心内容,广泛应用于肿瘤、免疫及基础生物学研究。科研中常因实验设计不规范、对照缺失、机制逻辑不完善,导致 PPI 实验重复性低、数据质量差。
依托15年平台实操经验与高分文献实验范式,辉骏生物整理六大标准化 PPI 研究体系,覆盖二元互作验证、多蛋白互作分析、结合结构域鉴定、甲基化 / 泛素化修饰机制研究,一站式解决六大核心科研问题:
1.体内外联合验证双蛋白真实物理结合
2.验证内外源调控因子对蛋白互作强度的影响
3.同步检测单一蛋白与两种靶蛋白的互作模式
4.截短体实验定位蛋白互作关键结构域
5.靶蛋白甲基化修饰定量检测与机制探究
6.靶蛋白泛素化修饰表征及功能解析
辉骏生物标准化梳理 Co-IP、GST Pull-down 分组方案、实验质控与定量判读逻辑,搭建完整闭环 PPI 验证体系,为各科研单位提供稳定规范的蛋白互作整套实验解决方案。
Co-IP实验
Co-IP是利用“抗原-抗体”之间免疫结合的原理,在IP实验过程中保持目标蛋白同其互作蛋白的结合状态,使目标蛋白的互作蛋白共同被沉淀收集;

图1 Co-IP实验原理图
pull down一般指将目标蛋白通过GST、His等标签挂于树脂/磁珠,利用“蛋白标签-配体”之间的亲和作用原理,将带标签的目标蛋白纯化出来,再与待测的样本裂解液孵育,将裂解液中的互作蛋白调取下来。

图2 pull-down实验原理图
简单来说,Co-IP捕获目的蛋白及其互作蛋白,pulldown用融合标签的重组蛋白来捕获其互作蛋白。具体区别如下:

1、验证2个蛋白存在互作

一般通过体内Co-IP和体外Pull-down实验来共同验证2个蛋白相互作用。该研究通过体内Co-IP联合体外GST pull-down实验共同验证FBXO7与PRMT1的蛋白相互作用。
正拉Co-IP实验以IgG为阴性对照、PRMT1为实验组,WCL为样本总蛋白,目的看蛋白是否表达,均显示有条带,表明各组目的蛋白成功表达。PRMT1抗体IP下拉产物中可有效富集PRMT1蛋白,同时检测到FBXO7蛋白条带,证实PRMT1与FBXO7存在相互作用(图3c)。
反向Co-IP实验进一步验证二者互作,实验同样设置IgG为阴性对照、FBXO7为实验组,采用FBXO7抗体进行IP下拉。结果显示,FBXO7抗体可下拉富集到PRMT1蛋白,说明二者存在相互作用(图3d)。
体外GST pull-down实验验证二者的直接相互作用,实验以空载GST蛋白为对照、GST-FBXO7融合蛋白为实验组,His-MBP-PRMT1为待测互作蛋白。结果显示,GST-FBXO7融合蛋白可有效下拉His-MBP-PRMT1蛋白,而对照组无特异性条带,证实GST-FBXO7融合蛋白与His-MBP-PRMT1蛋白存在直接相互作用(图3g)。

图3 引自FBXO7 ubiquitinates PRMT1 to suppress serine synthesis and tumor growth in hepatocellular carcinoma. Nat Commun 15(1):4790(2024).
2、研究某因素对两个蛋白结合的影响

利用Co-IP实验检测某因素对2个蛋白结合量的变化。该研究通过Co-IP检测Flag-MVP蛋白对HA-ASK1与His-TRAF6相互作用的调控效果。实验设置多组对照排除实验干扰:
①组为空白对照组,
②组仅转染Flag-MVP质粒,
③组仅转染HA-ASK1质粒,
④组仅转染His-TRAF6质粒(四组为IP对照组);
⑤组共转染HA-ASK1与His-TRAF6质粒,
⑥组共转染Flag-MVP、HA-ASK1与His-TRAF6三种质粒(两组为IP实验组)。
Input结果显示,各质粒转染组均检测到对应目的蛋白条带,证实各外源蛋白均成功表达,可用于后续互作检测。
IP实验采用HA抗体进行下拉富集,⑤⑥组能富集到HA-ASK1蛋白,显示有条带,表明IP实验成功。IP实验结果显示,⑤组可通过HA-ASK1下拉富集到His-TRAF6蛋白,证实ASK1与TRAF6存在相互作用;而共转Flag-MVP的⑥组中,His-TRAF6特异性条带完全消失,表明Flag-MVP过表达可显著抑制ASK1与TRAF6的蛋白相互作用。

图4 引自Liu Q, Pan J, Bao L, et al. Major Vault Protein Prevents Atherosclerotic Plaque Destabilization by Suppressing Macrophage ASK1-JNK Signaling. Arterioscler Thromb Vasc Biol 42(5):580-596(2022).
3、验证1个蛋白与另外2个蛋白存在互作

利用CoIP同时验证1个蛋白与另外2个蛋白的之间的相互作用。该研究同时验证Pit1分别与RGA4、Pit2的蛋白相互作用。实验设置两组对照体系,第①组共转Pit1-HA质粒与RGA4-myc质粒,第②组共转Pit1-HA质粒与Pit2-myc质粒。
Input样本结果显示,各组均检测到对应的目的蛋白条带,证实所有外源质粒均成功表达目的蛋白;同时实验结果发现,转染RGA4质粒的样本未检测到Pit2蛋白条带,转染Pit2质粒的样本未检测到RGA4蛋白条带,二者互为阴性对照,排除了质粒交叉表达对实验结果的干扰。
IP实验采用HA抗体进行下拉富集,各组IP产物中均能检测到Pit1-HA蛋白条带,表明IP实验成功。IP结果显示,第①组样本中未检测到RGA4-myc特异性条带,表明Pit1与RGA4不存在蛋白相互作用;第②组样本可检测到Pit2-myc特异性条带,证实Pit1与Pit2存在相互作用。
综上,Pit1-HA与Pit2-Myc存在相互作用,与RGA4-Myc无相互作用。

图5 引自Li Y, Wang Q, Jia H, et al. An NLR paralog Pit2 generated from tandem duplication of Pit1 fine-tunes Pit1 localization and function. Nat Commun 15(1):4610(2024).
4、验证蛋白互作结构域

该研究通过CoIP实验体内验证FBXO7与PRMT1的结合结构域。实验以Flag-FBXO7为诱饵蛋白,GFP-PRMT1为待测蛋白,首先构建了PRMT1的多种截短体用于后续实验(图6h)。实验设置共转染GFP-PRMT1全长与Flag-FBXO7为对照组,共转染GFP-PRMT1不同截短体与Flag-FBXO7为实验组。
IP实验采用Flag抗体进行下拉富集,各组IP产物中均能检测到Flag-FBXO7蛋白条带,表明IP实验成功。IP结果显示,Flag-FBXO7可下拉富集到PRMT1全长蛋白,表明FBXO7与PRMT1存在相互作用。截短体结合实验结果表明,PRMT1的1-22位氨基酸截短体无法与FBXO7结合,条带消失,提示该片段并非二者的结合区域;而PRMT1其余两段截短体均可与FBXO7正常结合,显示有条带,明确了FBXO7与PRMT1的结合功能区域。
J图进一步验证发现Flag-FBXO7与PRMT1的23-162这一段截短体是有结合的;而缺失这一段之后,条带消失,说明这一段就是结合的区域。

图6 引自FBXO7 ubiquitinates PRMT1 to suppress serine synthesis and tumor growth in hepatocellular carcinoma. Nat Commun 15(1):4790(2024).

该研究通过GST Pull-down体外验证USP5与PD-1的蛋白结合的结构域。实验设置GST空载蛋白为对照组,以GST-USP5全长蛋白及不同截短体蛋白为实验组。
WCL组可检测到HA蛋白条带,银染结果证实各组GST空载蛋白、GST-USP5全长及截短体蛋白均成功纯化表达,可用于后续结合实验分析。
Pull-down实验洗脱结果显示,GST-USP5全长蛋白可有效富集PD-1-cHA蛋白,证实USP5与PD-1存在直接的体外相互作用;而缺失UBA1/2结构域的USP5截短体无法富集PD-1-cHA蛋白,结合条带完全消失,表明USP5的UBA1/2结构域是其与PD-1蛋白结合的核心区域。

图7 引自Xiao X, Shi J, He C, et al. ERK and USP5 govern PD-1 homeostasis via deubiquitination to modulate tumor immunotherapy. Nat Commun 14(1):2859(2023).
5、验证蛋白甲基化修饰水平

该研究通过Co-IP检测FBXO7对内源PHGDH甲基化修饰水平的调控作用。实验设置shScramble作为阴性对照组,两种FBXO7敲除细胞系作为实验组。
WCL样本结果显示,各组目的蛋白均有蛋白条带,证明样本中蛋白表达正常;且相较于对照组,实验组FBXO7蛋白条带显著减弱,证实FBXO7敲除细胞系构建成功,可用于后续实验分析。
IP实验利用PHGDH抗体进行下拉富集,结果显示,相较于对照组,FBXO7敲除细胞系中PHGDH甲基化位点条带显著加深,表明敲除FBXO7可显著促进PHGDH的甲基化修饰水平。同时,各组PHGDH总蛋白条带无明显差异,提示敲除FBXO7不影响PHGDH的本底表达水平。

图7 引自FBXO7 ubiquitinates PRMT1 to suppress serine synthesis and tumor growth in hepatocellular carcinoma. Nat Commun 15(1):4790(2024).
6、验证蛋白泛素化修饰水平

该研究通过Co-IP实验检测FBXO7对外源表达PRMT1蛋白泛素化修饰水平的影响。实验以GFP-PRMT1为待测蛋白、Flag-FBXO7(野生型及突变型)为诱饵蛋白,同时引入带HA标签的泛素蛋白(HA-Ub)用于指示蛋白泛素化修饰水平。对照组共转染Flag空载、HA-Ub与GFP-PRMT1质粒,实验组分别共转染Flag-FBXO7野生型/突变型、HA-Ub与GFP-PRMT1质粒。
IP实验通过GFP抗体下拉富集GFP标记的PRMT1蛋白,检测其泛素化修饰水平变化。IP结果显示,第2个泳道可检测到明显的HA条带,证实PRMT1蛋白本身存在基础水平的泛素化修饰;第3个泳道过表达野生型Flag-FBXO7后,HA条带显著加深,表明FBXO7可显著促进GFP-PRMT1的泛素化修饰水平。而第4个泳道转染Flag-FBXO7突变体后,HA条带无明显变化,进一步证实野生型FBXO7可特异性介导并促进PRMT1蛋白的泛素化修饰,突变型FBXO7则丧失该调控功能。

图8 引自FBXO7 ubiquitinates PRMT1 to suppress serine synthesis and tumor growth in hepatocellular carcinoma. Nat Commun 15(1):4790(2024).
1、Co-IP/Pull-down实验无互作条带、靶蛋白拉不下来是什么原因?
首先排查蛋白互作本身,部分蛋白互作属于弱瞬时互作,常规实验条件难以捕获。其次大概率是实验体系问题,裂解液若使用SDS等强变性去污剂,会直接破坏蛋白天然结合结构,彻底打断蛋白互作。
同时抗体选择不当、孵育时间过短、磁珠/琼脂糖珠用量不足,也会导致诱饵蛋白富集量低,无法抓取靶蛋白。另外,蛋白降解、样本反复冻融,会造成诱饵蛋白流失,最终出现无条带的情况。优化核心是选用NP-40等温和非变性裂解液,使用IP级抗体,充足孵育并优化磁珠用量。
2、Co-IP/Pull-down实验条带杂带多、背景极高如何解决?
高背景是该类实验最常见问题,核心原因是非特异性吸附过多。一是磁珠/树脂本身会非特异性结合杂蛋白;二是洗涤条件过于温和,洗涤次数少、洗涤液盐浓度和去污剂浓度过低,无法清洗杂蛋白;三是样本中存在未裂解完全的蛋白复合物、细胞碎片残留。
常用解决方案是实验前用空白珠子对样本进行预清除,增加洗涤次数、梯度提升洗涤液严谨度,同时样本裂解后短暂超声、高速离心取上清,去除杂质干扰。
3、Co-IP实验出现严重的抗体轻重链污染怎么办?
进行IP洗脱步骤的时候,诱饵蛋白、互作蛋白洗脱下来同时, 四聚体形式的IP抗体也会被一同洗脱下来,WB检测时会出现明显重链和轻链条带,严重干扰靶蛋白条带判读,尤其会影响后续质谱鉴定结果。

图9 IP抗体轻重链示意图
对于抗体轻重链污染问题,我们还能帮您解决麻烦:
1. 标签Co-IP:选择标签纳米抗体磁珠(Flag,HA,V5,GFP,RFP可选);
有需要可以联系辉骏生物~



以上是本期的主要内容~
辉骏专注蛋白互作十余载,提供各种类型纳米抗体磁珠(Flag,HA,V5,GFP,RFP)、IP专用二抗(VHH抗鼠)、标签抗体、内参抗体、蛋白互作试剂盒以及互作实验服务(RIP、RNA pull down、ChIP、DNA pull down、Co-IP实验)和蛋白检测服务(IP样本的蛋白鉴定,蛋白修饰鉴定、蛋白组学等)。
广州辉骏生物科技股份有限公司(Fitgene)成立于2011年,超15年科研服务经验,专业提供蛋白(抗体)和互作实验服务,包括蛋白质谱检测、蛋白/RNA/DNA/化合物等分子间相互作用检测、抗体稳定表达株构建、基因敲除和过表达细胞株构建等;同时还研发了纳米抗体磁珠、IP专用二抗、互作试剂盒、标签抗体等科研产品。
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