在最近发表在《自然》杂志上的一项研究中,研究人员确定了双链断裂(DSB)诱导的区室形成协调脱氧核糖核酸(DNA)损伤反应(DDR)的机制。
DNA DSB是极其危险的病变,可能导致易位或大的染色体重排,从而增加细胞稳态和遗传完整性受损的风险。染色质是至关重要的DNA修复,这可以通过同源重组或非同源型末端连接机制来完成;然而,关于染色体结构影响这些活动的机制的数据是有限的。虽然染色质在DNA修复中的作用已经被研究,但染色体折叠在这些过程中的作用尚不清楚。
研究人员进行了γ组蛋白2AX(gH 2AX)染色质免疫沉淀,然后进行测序(ChIP-seq)和直接DSB作图来检测DSB。从人DIvA细胞系收集的Hi-C数据用于研究三维(3D)基因组结构,添加羟基他莫昔芬(OHT)以在确定的位点引起许多DSB。
使用Hi-C分析在共济失调毛细血管扩张突变(ATM)和DNA依赖性蛋白激酶(DNA-PK)的存在下检查磷酸肌醇3-激酶(PI 3 K)样蛋白激酶在DSB应答中的作用,这两者都影响DSB处的H2 AX积累。
使用磷酸化ATM(pATM)ChIP-seq分析鉴定未处理的DIvA细胞中的内源性DSB热点。此外,使用随机照明显微镜(RIM)对53结合蛋白(53 BP 1)-绿色荧光蛋白(GFP)DIvA细胞进行活体成像。
半荧光恢复后光漂白(半FRAP)被用来阐明的过程中,导致DSB集群。在DSB诱导之前和之后进行核糖核酸(RNA)测序以鉴定在DSB形成之后增强的基因。
DSB诱导后,对DIvA细胞进行高通量测序(DRIP-seq),以研究D区室发育和R环之间的相互作用。RNase H1过表达对DSB聚类的影响和中断DSB聚类的影响通过耗尽LINC复合物的SUN 2组分来确定。还进行了定量逆转录聚合酶链反应(RT-qPCR)测定,以定量染色体内DSB非法再连接的发生。
ATM诱导创建一个新的染色质区室,称为D区室,在哺乳动物细胞DSB后,通过聚类损伤的拓扑相关结构域(TADs)与53BP1和H2AX装饰。辐射加强了整个基因组的TADs。
在DSB诱导后,被H2 AX/53 BP 1覆盖的受损TADs建立了一个新的染色质区室,与基因组的其余部分分离。通过与聚合物-聚合物相分离(PPPS)而不是液-液相分离(LLP)相关的方法产生D隔室。在G1期形成的D染色质区室不受凝聚力的影响,并受到药理学DNA-PK抑制和R环增生的促进。
通过R环富集的DDR基因物理上重新定位到新的D区室,从而增强激活并为DDR中的DSB聚类提供目的。然而,由DSB诱导的染色体重构伴随着增加的易位率,这也在肿瘤基因组中观察到。
DSB通过PI 3 K样蛋白如DNA依赖性蛋白激酶和ATM激活DDR,并产生gH 2AX染色质结构域,促进信号传导事件如DDR焦点形成和53 BP 1募集。抑制ATM活性减少DSB聚簇,而抑制DNA-PK活性显著增强DSB聚簇。
核骨架与细胞骨架(LINC)复合物的连接体、肌动蛋白网络和53BP1的相分离特征影响DSB聚类。DSB聚集的作用仍然未知,因为DSB的并置可能导致易位,这质疑DSB聚集或修复局灶性融合的选择性益处。 DSB诱导后的R环积累是靶向D染色质区室的DDR基因增加的标志。房室破裂限制了DDR基因的一个子集的激活,而增加D-室的发展引起DDR基因的过度激活。
根据研究结果,染色体设计在DNA修复机制中至关重要,特别是在DSB和DDR方面。ATM有助于修复受损的TADs,这些TADs聚集在核空间内。ATM和信元周期调节的DSB聚类控制DSB聚类。DDR基因通过D区室化分离,这是由激活的D基因中的R环促进的。DSB引起的染色体结构变化也可能通过易位危及基因组的完整性。
H2
AX/53 BP
1相关结构域从染色质中的自分离导致D区室的产生,该D区室募集并激活DDR相关基因,特别是那些易于形成R环的基因。富含R环的DDR激活基因在D区室内的物理重新定位使得能够关于DSB加载和持久性进行精确的DDR调节。然而,该事件增加了潜在易位的风险,因为微聚结和环挤出可能使线性距离的DSB紧密接触。
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